Скачати повний текст

Індекс рубрикатора НБУВ: Е50*801.1-640.2 + П127.591

Рубрики:

Загальна ботаніка

Солестійкість і адаптація культурних рослин до солей

Шифр НБУВ: Ж60216 Пошук видання у каталогах НБУВ 

Проаналізовано роль рослинних вакуоль у життєдіяльності рослин, зокрема в підтриманні клітинного тургорного тиску, зберіганні мінералів і поживних речовин. Описано головні механізми транспорту через мембрану вакуолі. Наведено основні типи транспорту поживних речовин, важких металів, вітамінів та органічних сполук через тонопласт вакуоль. Розглянуто головні системи мембранного транспорту рослинних вакуоль, їх ізіологічні функції та охарактеризовано найвідоміші транспортні протеїни вакуоль. Обговорено значення та роль транспорту сполук різної природи у вакуолі для життєдіяльності рослини. Описано головні типи рослинних вакуоль та їх роль у функціонуванні рослини. Розглянуто сучасний стан досліджень транспорту рослинних вакуоль. Надано приклади використання принципів і механізмів вакуолярного транспорту в різних галузях біотехнології рослин. Окреслено перспективи нових напрямів і підходів у розвитку біотехнології рослин із застосуванням різних типів вакуоль і систем мембранного вакуолярного транспорту.

Наведено основні типи вакуоль рослинних клітин та їх характеристики. Розглянуто їх будову, функції та роль у підтриманні клітинного гомеостазу. Описано моделі й особливості везикулярного транспорту і адресації до різних типів вакуоль. Запропоновано подальші перспективні напрямки досліджень цих клітинних органел.

Індекс рубрикатора НБУВ: Е50*443.1 + Е422.151.16*44

Рубрики:

Загальна ботаніка

Escherichia

Шифр НБУВ: Ж22412/а Пошук видання у каталогах НБУВ 

У ряді публікацій описано використання сайт-специфічної рекомбіназної системи Cre/loxP під контролем тканиноспецифічних промоторів для одержання трансформантів, вільних від селективних маркерних генів (СМГ). Недоліком в даному випадку є створення специфічних умов для проведення трансформації або залучення додаткових агентів для ініціації експресії рекомбінази. Розроблено новий підхід до використання сайт-специфічної рекомбіназної системи Cre/loxP для одержання генетично модифікованих рослин, вільних від СМГ, і встановлено ефективність роботи рекомбінази Cre у наступному поколінні трансформованих рослин A. thaliana.

Досліджено особливості клітинної локалізації двох калієвих каналів родини ТРК з рослин тютюну. Послідовності кДНК NtTPK1a та NtTPK1b клоновано у вектори для створення злитих з EYFP химерних білків. Завдяки транзієнтній трансформації протопластів рослин NtTPK1a - EYFP і NtTPK1b - EYFP конструкціями встановлено відмінності у клітинній локалізації NtTPK1a і NtTPK1b. Показано, що NtTPK1b локалізується у везикулярних структурах, що відрізняються від "класичних" літичних вакуоль.

Індекс рубрикатора НБУВ: Е50*443.1 + П212.7-271

Рубрики:

Загальна ботаніка

Ячмінь

Шифр НБУВ: Ж22412/а Пошук видання у каталогах НБУВ 

Індекс рубрикатора НБУВ: Е0*443.1 + Е422.151.15*44

Рубрики:

Загальна біологія

Erwinia

Шифр НБУВ: Ж60216 Пошук видання у каталогах НБУВ 

Досліджено характер відповіді рослин рису на дію водного стресу (16 % поліетиленгліколь 4000), високих концентрацій NaCl, KCl і комбінації малих концентрацій KCl із високими NaCl у процесі трансформації генами, що кодують вакуолярні калієві канали родини TPK, а саме OsTPKa та OsTPKb. Показано, що рослини, трансформовані OsTPKa, є більш стійкими до випливу високих концентрацій NaCl і KCl. У порівнянні з OsTPKa трансформантами рослини рису, що були трансформовані геном OsTPKb, є більш стійкими до впливу водного стресу та високих концентрацій NaCl за наявності у середовищі культивування 50 мкМ KCl. Таким чином, встановлено, що трансформація рослин генами вакуолярних калієвих каналів родини TPK з метою підвищення рівня експресії останніх покращує показники стійкості до дії високих концентрацій NaCl, KCl і дефіциту води. Стійкість трансформантів до дії сольового та водного стресу відрізняється за своїм характером і залежить від типу гена, що був додатково привнесений у геном рису.

Проведено кладистичний аналіз і побудовано філогенетичне дерево найближчих гомологів протеїнкінази KIN10 із Arabidopsis thaliana. Показано, що KIN10 та її 2 найближчих гомолога в рослинах A. thaliana: KIN11 (P92958) та Akin11 (Q9FLZ3) є представниками унікальної підродини рослинних протеїнкіназ SnRK1. Охарактеризовано експресію KIN10 у різних органах рослин A. thaliana. Найбільшу кількість транскриптів KIN10 відмічено в наземній фотосинтезувальній частині рослин, де протеїнкіназа KIN10 забезпечує регуляцію біосинтетичних і різноманітних сигнальних процесів.

Показано фенотипові зміни кореневої системи проростків Arabidopsis thaliana в трансгенних лініях з посиленою та пригніченою експресією гена серинтреонінової протеінкінази KIN 10 за умов енергетичного голоду та за нормальних умов. Зафіксовано нормальний ріст - розвиток рослин з посиленою експресією гена KIN 10 за енергетичного дефіциту та значне відставання у розвитку цих рослин за нормальних умов. Проаналізовано рівні експресії гена KIN 10 за нормальних умов у різних органах A. thaliana, зокрема в корені, стеблі, листі та квітках. Найвищий рівень експресії цього гена зафіксовано в листі.

Індекс рубрикатора НБУВ: Е50*444*80 + Е50*551.7*715.7

Рубрики:

Загальна ботаніка

Шифр НБУВ: РА425841 Пошук видання у каталогах НБУВ 

Введено в культуру in vitro рослини кількох сортів пшениці м'якої (Triticum aestivum L.) і досліджено їх регенераційну здатність. Відібрано сорти Миронівська 67 і Мірхад із метою перенесення в геном дріжджових (Saccharomyces cerevisiae) генів біосинтезу трегалози (TPS1 і TPS2) задля підвищення їх посухостійкості. Перенесення генів здійснено за допомогою Agrobacterium-опосередкованої трансформації, для цього було створено відповідні векторні конструкції pBract214-TPS1 і pBract214-TPS2 із застосуванням технології Gateway-клонування. Як експланти для трансформації використано незрілі зародки пшениці. В експериментах використано штами A. tumefaciens GV3101, які несли окремо конструкції pBract214-TPS1 і pBract214-TPS2 із цільовими генами TPS1 і TPS2 відповідно, що знаходились під контролем промотору убіхітину кукурудзи PUbi, і селективним маркерним геном гігроміцин-фосфотрансферази (hpt). Селекцію трансгенних ліній здійснено на поживних середовищах за присутності гігроміцину. Трансгенну природу отриманих ліній підтверджено за допомогою ПЛР-методу з використанням специфічних праймерів до генів TPS1 і TPS2.